Détermination de la position du fuseau mitotique et du plan de clivage cellulaire

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La division cellulaire asymétrique est le type de division principalement utilisé par les cellules souches et joue un rôle central dans la création de la diversité au cours du développement des organismes pluricellulaires. Lors de certaines divisions cellulaires, les déterminants d’identité cellulaire sont ségrégés asymétriquement entre les cellules filles. La position du fuseau mitotique dans le noyau cellulaire détermine si la cellule se divise de façon symétrique ou asymétrique. A son tour, le positionnement du fuseau dépend des interactions entre les microtubules et des facteurs corticaux. Un réseau complexe de protéines, incluant des protéines non-motrices associées aux microtubules (plus-end tracking proteins, +TIPs), des moteurs moléculaires (kinèsines et dynéine) et des protéines interagissant avec l’actine, est impliqué dans ces interactions.

La levure bourgeonnante est utilisée comme organisme modèle pour étudier la division cellulaire asymétrique. Le positionnement du fuseau dans la levure est régulé par deux voies génétiquement identifiées, qui sont des médiateurs universels du positionnement du fuseau pendant la division cellulaire asymétrique chez les eucaryotes. Cependant, leur régulation n’est pas bien comprise.

Nous cherchons à comprendre comment des régulateurs du cycle cellulaire peuvent contrôler les médiateurs du positionnement du fuseau ainsi que les autres processus du cytosquelette, par exemple, la ségrégation des chromosomes et la cytokinèse.  Pour cela, nous utilisons des approches génétiques, biochimiques/biophysiques et de la vidéo-microscopie à fluorescence.

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Dimitris Liakopoulos

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    (Chercheur DR2) +33 (0)4 34 35 96 43
  • Florence GAVEN
    (IE-Recherche) +33 (0)4 34 35 95 67
  • Dimitris LIAKOPOULOS Chef d'equipe
    (Chercheur DR2) +33 (0)4 34 35 95 67
  • Didier PORTRAN
    (CRCN) +33 (0)4 34 35 96 43
    • 2019

      How Does SUMO Participate in Spindle Organization?

      Abrieu A, Liakopoulos D.

      Cells. 8(8). Pubmed

    • 2019

      Lattice defects induce microtubule self-renewal

      Laura Schaedel, Sarah Triclin, Denis Chrétien, Ariane Abrieu, Charlotte Aumeier, Jérémie Gaillard, Laurent Blanchoin, Manuel Théry & Karin John

      Nature Physicsvolume 15, pages830–838 Pubmed

    • 2018

      An E2-ubiquitin thioester-driven approach to identify substrates modified with ubiquitin and ubiquitin-like molecules.

      Bakos G, Yu L, Gak IA, Roumeliotis TI, Liakopoulos D, Choudhary JS, Mansfeld J.

      Nat Commun. 9(1):4776. Pubmed

    • 2016

      Kar9 controls the nucleocytoplasmic distribution of yeast EB1.

      J. Schweiggert, D. Panigada, AN. Tan, D. Liakopoulos

      Cell Cycle, 15 : 2860-2866. Pubmed

    • 2016

      Regulation of a Spindle Positioning Factor at Kinetochores by SUMO-Targeted Ubiquitin Ligases.

      Schweiggert J, Stevermann L, Panigada D, Kammerer D, Liakopoulos D.

      Dev Cell. 36:415-27. Pubmed

    • 2015

      Kinesin Kip2 enhances microtubule growth in vitro through length-dependent feedback on polymerization and catastrophe.

      Hibbel A, Bogdanova A, Mahamdeh M, Jannasch A, Storch M, Schäffer E, Liakopoulos D, Howard J.

      Elife. 4: e10542. Pubmed

    • 2013

      An auxiliary, membrane-based mechanism for nuclear migration in budding yeast.

      Kirchenbauer M, Liakopoulos D.

      Mol Biol Cell. 24(9):1434-43. Pubmed

    • 2010

      Ubiquitylation regulates interactions of astral microtubules with the cleavage apparatus.

      Kammerer D, Stevermann L, Liakopoulos D.

      Curr Biol. 20(14):1233-43. Pubmed

    • 2010

      Arp1, an actin-related protein, in Plasmodium berghei.

      Siden-Kiamos I, Schüler H, Liakopoulos D, Louis C.

      Mol Biochem Parasitol. 173(2):88-96. Pubmed

    • 2008

      Regulation of mitotic spindle asymmetry by SUMO and the spindle-assembly checkpoint in yeast.

      Leisner C, Kammerer D, Denoth A, Britschi M, Barral Y, Liakopoulos D.

      Curr Biol. 18(16):1249-55. Pubmed